ERK1/2参与IL—33诱导的心脏成纤维细胞增殖和纤维化过程(2)
1.2.3 RT-PCR检测标记性基因 α-SMA及信号通路关键因子TRAF-6的mRNA表达变化 取对数期生长细胞,消化后调整密度至5×105/mL 接种于培养瓶。无血清培养基同步化饥饿12 h,再以10 ng/mL IL-33诱导24 h,其中检测α-SMA时用40μM PD98059预处理60 min,RNA提取试剂盒提取总RNA,逆转录成cDNA。α-SMA上游引物:5'- ACTCTCTTCCAGCCATCTTTCATT-3',下游引物:5'-CTTCGTCGTATTCCTGTTTGCT-3';TRAF-6上游引物:5'- TCTCCCCTGCCTTCATTGTT-3',下游引物:5'-AGGCTGGCGAT-TTTGTGTTT-3';β-actin上游引5'-ACGGTCACAG-GTCATCACTATCG-3',下游引物:5'- GGCATAGAGGTCTTTACGGATG-3'。扩增条件:95℃预变性2 min;95℃变性15s,58℃退火30s,72℃延伸30 s,40个循环。扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳,凝胶成像系统观察扫描并进行电泳条带分析,以目的条带与β-actin条带的比值作为目的条带的相对值。各组实验均重复3次。
1.2.4 Western blot检测α-SMA、TRAF-6、ERK1/2 和p-ERK1/2蛋白表达 细胞以10 ng/mL IL-33诱导24 h,其中检测α-SMA时用40μM PD98059预处理60 min,收集细胞,预冷PBS洗涤2次,加入200 μL RIPA裂解液(每1 mL裂解液中加10 μL PMSF),冰上裂解30 min,超声,4℃、12000 rpm离心10 min,取上清。Bradford法测定蛋白含量。4∶1体积比加入上样缓冲液,100℃ 5 min变性。每孔上样等量总蛋白,SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳。30v转膜150 min,含5%脱脂奶粉的TBST室温封闭1h。TBST洗膜3次,分别加入一抗α-SMA(1∶1000稀释)、TRAF-6、ERK1/2和p-ERK1/2(1∶400稀释),4℃孵育过夜。TBST洗膜3次,加入对应二抗(1∶500稀释),室温孵育1 h。最后BCIP/NBT显色液暗处显色观察,凝胶成像系统扫描分析,磷酸化水平用磷酸化蛋白和总蛋白的相对值表示,目的蛋白水平用目的蛋白和内参蛋白的相对值表示。各组实验均重复3次。
1.3 统计学分析
数据采用SPSS 13.0 统计学软件进行,所有实验数据以均数±标准差(x±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较用LSD-t法,P<0.05表示差异有统计学意义。
2 结果
2.1 IL-33对心脏成纤维细胞增殖的影响
加入10 ng/mL IL-33刺激细胞培养24、48、72 h 后,各组细胞生长状态良好,随着培养时间的延长,细胞数量不断增多。MTT结果显示,与未刺激组比较,IL-33明显诱导细胞增殖(P<0.05),见表1。
2.2 IL-33对TRAF-6 mRNA和蛋白水平的影响
与对照组相比,TRAF-6 mRNA和蛋白水平均明显上升(P<0.05),见图1和表2。表明IL-33诱导心脏成纤维细胞时,活化其下游信号。
2.3 IL-33对p-ERK1/2和ERK1/2蛋白表达的影响
Western- blot 结果显示,IL- 33刺激心脏成纤维细胞后ERK1/2总蛋白无明显变化,而p-ERK1/2蛋白表达明显升高,与对照组比较,有显著性差异(P<0.05),见图1和表2。表明IL-33/ST2-TRAF-6 信号通路激活后,引起下游ERK1/2通路的参与。
2.4 IL-33对α-SMA mRNA和蛋白水平的影响
α-SMA是肌成纤维细胞的标记性蛋白。我们结果显示,IL- 33刺激成纤维细胞24 h后,α-SMA mRNA和蛋白表达明显上调(P<0.05);40 μM PD98059预处理60 min后,α-SMA水平较单纯刺激组显著减弱,差异具有统计学意义(P<0.05),见图1和表3。表明IL-33诱导了心脏成纤维细胞向肌成纤维细胞转分化,这一过程可以被ERK1/2特异性阻断剂所抑制。
3 讨论
心力衰竭是各种危重心血管疾病的终末阶段,由于心肌损伤,引起心肌间质纤维化、心肌肥大和心功能不良,限制心肌细胞活动,降低心室顺应性,影响心肌的收缩和舒张功能,导致心脏重构[6,7]。在慢性炎症过程中,有多种炎症细胞参与,并释放多种炎症因子,导致肌成纤维细胞的形成并大量分泌ECM,最终导致纤维化[2,8-9]。因此确切认识心肌纤维化发生机制,有针对性地采取措施,进而有效预防和逆转心肌纤维化,对心衰的早期治疗也有着重要意义。
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